取材后病理定量分析注意事项
① 常规HE染色，切片厚度应≤4μm。
② 光镜下首先区分有否特异性病变及范围，然后由脏器一端向另一端进行整体观察和描述。
③ 观察小动物脏器有否肿大、增生，用10倍镜由一端开始计数该脏器包含的10倍镜镜头视野数，或计数整个切片中功能单位数。如脾生发中心、胸腺小叶、肝小叶、肾小球及整个切片中病变灶数量。
④ 大动物脏器疑有肿大、增生时，用40倍镜头计数每一视野中的细胞或功能单位数。心肌、骨骼肌在与长轴平行的切面上计数每一视野直径中的肌纤维数‚肝小叶中肝细胞索数（数40倍镜视野的一半）。根据需要计数10～20个40倍镜视野。
⑤ 确定病灶大小及积分用40倍镜头进行观察。先将镜头的圆周与观察的病灶边缘相切，再观察该病灶在这一视野中的比例。
⑥ 实验动物肿瘤发生率的计算：动物肿瘤的组织分化常不明显，在长期毒性试验或诱癌实验中出现的肿瘤不论良、恶性均计入肿瘤发生数，并计算肿瘤发生率。
实验动物组织电镜取材注意事项及要求
电镜生物样品的取材,正确与否决定着实验结果的准确性,电镜要求样品必须忠实地反映其生活时的状态,应尽量避免“死后改变”和人为假象的发生,现将电镜取材注意事项总结如下:
① 取材部位要准确: 器官、部位要准确,如观察肾小球需取肾皮质而不要取到肾髓质。
② 动作迅速: 活体(血供未断)取材,料离体后需在1min内放入固定液(戊二)使组织尽可能保持原来的生活状态。
③ 材料体积要小: 一般不超过1m使组织得到均匀而充分的固定,需要定向包埋的样品(如皮肤肌肉、血管等)应切成1x3mm'的长条。
④ 机械损伤要小: 取材应用锋利、清洁的双面刀片(新刀片应用酒精去除刀锋上的油脂),尽量避免牵拉和挤压。
⑤ 低温: 固定液4保存,取材所需器械应进行预冷,取材过程在冰盒上进行,取好的样品放在含固定液的小瓶中4C保存,尽量降低酶的活性,减少细胞的损伤。
