看了别人文献里的PCR方法，照搬了人家的引物，还是做得每次结果都不一样？不是Ct值出现过晚，就是扩增曲线变化很奇怪，总是操作过程中时不时有这样或者那样的问题，遇到这些问题怎么处理呢？实践出真知，今天给大家汇总一下qPCR常见的疑难解答，看下方详细介绍：

答：

1. 扩增效率低，反应条件不够优化，降低退火温度，增加镁离子浓度。

2. 反应成分降解或加样量不足

3. PCR产物过长，一般采用80-150bp.

答：

1. 加样存在误差，是样品浓度不成梯度。

2. 标准品出现降解，避免反复冻融。

3. 引物或者探针设计不佳。

4. 模板中存在抑制物或模板浓度过高。

答：

1. 引物设计不够优化。

2. 引物浓度不佳，上下游引物浓度比例不一致。

3. 镁离子浓度过高。

4. 模板基因组的污染。

答:

1. 试剂配制时反应液没有完全溶化，导致探针量在一管增多。

2. 试剂配制时没有充分混匀致各管中各成分的量不同。

3. PCR仪热槽被荧光物质污染，需要清除热槽中的污染。

答：

1. 反应过程中电压不稳定

2. 可能在20个循环左右时，仪器有停下或仪器有开盖，使光线突然增强

3. 如果尖峰向下，可能是由卤素灯老化所致，这时应更换。

答:

1. 提取液残留，一定程度抑制了PCR反应

2. 反应液未严格取量混匀或分装不均匀

3. 试剂失效

答：

1. 模板提取环境或操作过程有污染

2. 配液过程存在污染

答：

1. 探针部分降解：一般稀释的探针可在4°C保存至少3个月，探针的反复冻融或导致降解；或者探针在光线下暴露时间太长了。

2. 反应液中有PCR抑制物。

答：

1. PCR参数设置错误，在设计循环参数时将荧光信号读取时间设在反应的第一步，即stage1阶段

2. 电脑设定了自动休眠

答：基线选取范围不对，可试着将基线范围改大一些，这一问题常因试剂质量所致。

答：基线选取范围不对，基线终点大于Ct值，这通常是由于模板DNA浓度过高所致，因Ct值<15，而基线范围仍取3-15，其中包含部分扩增信号，导致标准差偏大，阈值过高，解决办法：减少基线终点至Ct前4个循环，重新分析数据。

答：样品浓度过高，导致阳性样品扩增曲线在后面循环中呈一向下的直线，其解决方法同“扩增曲线断裂”。

答：常因反应管封口不严，至反应液蒸发所致。

答:

1. 首先确定模板RNA完整性好，无DNA污染。

2. RNA模板中不应含有扩增反应抑制剂

3. 为了防止模板降解，在反应体系中加入RNase抑制剂RNasin。

4. 使用适量的模板RNA，模板量太多会降低特异性，太少会导致扩增不出条带或条带太弱。

5. 若模板中有二级结构，可通过提高逆转录反应温度来提高扩增效果。

6. 设计引物时，避免在引物3’端含有互补序列，避免形成内部发卡结构。

答:

1. 在用来验证完整性之前先在变性胶上分析RNA

2. 使用良好无污染技术分离RNA

3. 将组织从动物体取出后立刻提取RNA，并将提取好的RNA反转录为cDNA进行低温保存。

答:逆转录抑制剂包括：SDS、EDTA、甘油、焦磷酸钠、亚精胺和胍盐，可将对照RNA同样品混合，同对照RNA反应比较产量以检测RNA抑制剂；若对照RNA与样品混合后产量降低，则说明样品中存在逆转录抑制剂，可用70%（v/v）乙醇对RNA沉淀进行清洗，以除去抑制剂。

答:确定退火温度适合实验中所用的引物。如随机六聚体，建议在反应温度保温之前先在25℃保温10min。

答:

1. 将RNA和引物在不含盐及缓冲液条件下变性、退火；提高逆转录反应温度。

2. 温度超过60℃时，不能使用oligo（dT）引物，选择一个在反应温度可以退火的GSP

3. RT-PCR产物的长度超过1kb时，反应温度需保持在65℃。

答：

1. 若是基因组DNA的污染，可使用DNaseI处理RNA; 同时设置没有逆转录的对照组反应检测DNA污染。

2. 若是受到外源DNA的污染，可使用抗气雾剂和UDG酶。

答:

1. 扩增片段的长度不应太大，一般小于300bp。

2. 探针不能和任一引物互补，且其长度在保证特异性的前提下尽可能的短，长度不要超过30bp。

3. 探针的Tm值至少比引物的Tm值高5度

4. 探针如用于检测多态位点，多态位点应尽可能靠近探针中部

5. 探针5’端不能是碱基G，G对荧光基团有猝灭作用。

答：

1. 体外转录时不可能将所有DNA模板消除，因而对照组会含有痕量的DNA。建议可将第一链cDNA稀释1:10、1:100、1:1000倍以消除DNA污染造成的影响。

2. 可能是引物二聚体的条带。

答：

1. 可能是由于模板量过高而导致PCR结果产生了高分子量的DNA胶状物。建议将第一链cDNA浓度稀释至100倍再进行二次扩增。

2. 在二次PCR时，使用的退火温度如果比引物的Tm值低5℃，可将退火温度适当增高或进行热启动以提高特异性。

答：

1. 反应循环参数不够，一般要在35个循环以上，但是过多的循环次数可增加背景值。

2. 检测荧光信号的步骤有误。SYBRgreen法（SG法）采用的是72℃延伸时采集荧光信号，taqman法则是在退火结束或延伸结束时进行信号采集。

3. 引物或探针降解，可用PAGE电泳检测其完整性，若是电泳条带呈弥散状，可考虑重新合成引物或探针。

4. 模板不足或降解，则可以重新提取核酸模板。